Влияние введения мексидола на фоне 60-дневного воздействия тартразина на ультраструктуру эндокриноцитов коркового вещества надпочечных желёз крыс

Методы. В эксперименте 30 белых половозрелых крыс были распределены на 5 групп: 1-я группа – контрольная, 2-я и 3-я группы – крысы, подвергавшиеся ежедневному 60-суточному воздействию тартразина из расчета 750 и 1500 мг/кг. В 4-й и 5-й группах на фоне условий 2-й и 3-й групп вводился мексидол внутримышечно из расчёта 50 мг/кг. Электронно-микроскопическое исследование надпочечных желёз проводили по стандартному протоколу. Результаты. Во 2-й группе эпителиоциты клубочковой и пучковой зон имеют округлое или овальное ядро с неровными контурами. Ядро содержит скопления гетерохроматина под кариолеммой и в кариоплазме; в цитоплазме крупные митохондрии имеют кристы везикулярной формы. Цистерны агранулярной эндоплазматической сети слабо развиты. Липидные включения расположены группами или поодиночке. В 3-й группе в цитоплазме эндокриноцитов клубочковой зоны выявлялись митохондрии с частично разрушенными кристами, а в эпителиоцитах пучковой зоны – в центре или на периферии митохондрий определялись рыхло упакованные пластинчатые структуры, а также клетки с явлениями апоптоза. Эндокриноциты сетчатой зоны крыс 2-й группы имеют небольшой размер, овальное ядро со слабо извилистыми контурами и скоплениями гетерохроматина в кариоплазме. Митохондрии крупных и средних размеров со сферическими кристами в сечении, цистерны агранулярной эндоплазматической сети неравномерно расширены и заполняют промежутки между митохондриями. В 3-й группе практически у половины крупных митохондрий по периферии или в центре располагаются плотно упакованные пластинчатые структуры. Вывод. Выше установленные ультрамикроскопические особенности эндокриноцитов коркового вещества надпочечных желез после 60-суточного воздействия тартразина свидетельствуют о снижении их секреторной активности, которая имеет зависимость от вводимой дозы добавки. Введение мексидола на этом фоне способствует восстановлению нарушенной ультрамикроскопической картины клеток до контрольных значений, более выраженное в 4-й группе

1. Rovina K. A., Siddiquee S., Shaarani S. M. Review of Extraction and Analytical Methods for the Determination of Tartrazine (E 102) in Foodstuffs // Critical Reviews in Analytical Chemistry. 2017. 47(4). 309-324. DOI: 10.1080/10408347.2017.1287558

2. Kaya S. I., Cetinkaya A., Ozkan S. A. Latest advances on the nanomaterials- based electrochemical analysis of azo toxic dyes Sunset Yellow and Tartrazine in food samples // Food and Chemical Toxicology. 2021. 156. 112524. DOI: 10.1016/j.fct.2021.112524

3. Vinson G. P., Brennan C. H. Addiction and the adrenal cortex // Endocrine Connections. 2013. 2(3). R1-R14. DOI: 10.1530/EC-13-0028

4. Шамрей В. К., Курасов Е. С., Нечипоренко В. В., Колчев А. И., Цыган Н. В. Возможности применения Мексидола в комплексной терапии психических расстройств // Журнал неврологии и психиатрии им. С. С. Корсакова. 2020. 120(5). 160-164. DOI: 10.17116/jnevro2020120051160

5. Directive 2010/63 / EU of the European Parliament and of the Council of the European Union on the protection of animals used for scientific purposes, complying with the requirements of the European Economic Area. 2010. URL: https://leap.unep.org/countries/eu/national-legislation/directive-201063eu-european- parliament-and-council-protection/ (Дата обращения: 15.05.2023).

6. Reynolds E. S. The use of lead citrate at high pH as an electron-opaque stain in electron microscopy // The journal of cell biology. 1963. 17. 208-212. DOI: 10.1083/jcb.17.1.208

7. Яглова Н. В., Обернихин С. С., Яглов В. В., Тимохина Е. П., Назимова С. В., Цомартова Д. А. Возрастные изменения структуры митохондрий – регулятор активности стероидогенеза в кортикостероцитах надпочечников крыс // Клиническая и экспериментальная морфология. 2020. 9(1). 64-70. DOI: 10.31088/ CEM2020.9.1.64-70

8. El-Desoky G. E-B., Wabaidur S. M., Alothman Z. A., Habila M. A. Regulatory Role of Nano-Curcumin against Tartrazine-Induced Oxidative Stress, Apoptosis-Related Genes Expression, and Genotoxicity in Rats // Molecules. 2020. 25(24). 5801. DOI: 10.3390/molecules25245801

9. Khayyat L., Essawy A., Sorour J., Soffar A. Tartrazine induces structural and functional aberrations and genotoxic effects in vivo // PeerJ. 2017. 5. e3041. DOI: 10.7717/peerj.3041

10. Afzal N., Lederer W. J., Jafri M. S., Mannella C. A. Effect of crista morphology on mitochondrial ATP output: A computational study // Current research in Physiology. 2021. 4. 163-176. DOI: 10.1016/j.crphys.2021.03.005

11. Midzak A. S., Chen H., Aon M. A., Papadopoulos V., Zirkin B. R. ATP Synthesis, Mitochondrial Function, and Steroid Biosynthesis in Rodent Primary and Tumor Leydig Cells // Biology of reproduction. 2011. 84(5). 976–985. DOI: 10.1095/biolreprod.110.087460

12. Щулькин А. В. Мексидол: современные аспекты фармакокинетики и фармакодинамики // Фарматека. 2016. S4. 65-71.